计算SVF处理方法比较
基质血管分数(SVF)简介
近年来,从脂肪组织中提取的脂质体已成为脂肪组织源性干细胞(ADSCs)用于自体细胞治疗的重要来源1、2、3.在吸脂完成后,必须加工原料脂脂酸盐以获得基质血管级分(SVF)。来自脂肪组织的基质血管级分含有细胞的异质混合物,包括内皮细胞,平滑肌细胞,围梗塞,白细胞,肥大细胞,成熟脂肪细胞,脂肪细胞和脂肪组织衍生的干细胞(ADSC)4、5.从SVF中计数活细胞是处理冰冻保存和/或细胞治疗样品的重要步骤。SVF中的大部分成分是有核细胞,可用核染料吖啶橙(AO)、碘化丙啶(PI)和Hoechst 33342来枚举。
碘化丙啶(PI)是膜排除染料,其经常用于用受损害的膜染色不可活性的核细胞。吖啶橙(AO)在细胞膜上自由扩散,并在所有核细胞中染色DNA。当组合AO和PI时,可以确定成核细胞的可行性百分比6,7.类似地,虽然带电的PI被活细胞排除,但是Hoechst 33342(Ho)穿过质膜渗透并可在活细胞中染色DNA6,7,8.根据这些染料特性,我们可以准确地获得总的有核细胞数量和细胞活力。
这里报道的数据显示了SVF样品计数方法的比较研究结果。在该实验中使用了三种检测方法,分析了两种单独的犬SVF样品:使用液压计视觉图像细胞仪的双荧光染色方法,流式细胞仪和使用血细胞计数计数。
细胞计、流式细胞仪和血球计计数的染色协议
Cellometer Vision CBA协议
将新鲜的SVF样品在PBS中稀释1:100。将样品与染色剂混合在1:1稀释。将Hoechst染色样品在37℃下孵育45分钟。将AO / PI与SVF样品混合在1:1的比例下并立即分析。
流式细胞分析仪协议
新鲜SVF样品在PBS中以1:100稀释。将75µl稀释SVF与75µl HO/PI溶液(2x stock)混合,37℃水浴孵育45分钟。将150µl的CytoCount珠制剂(Dako)加入到染色的SVF样品中,最终浓度为1:400。混合物在协同细胞分选机(iCyt/Sony)上分析,计数10000颗珠子。用珠与Hoechst阳性细胞(在犬PBMC上门控)的比例来测定每毫升SVF样本中活细胞和死细胞(PI阳性)的百分比。
血细胞计计方案
将新鲜的SVF样品在PBS中稀释1:100,随后1:10 Trypan Blue(TB)产生终浓度为1:1000。两个完整方块的平均值用于计算每mL SVF样品的%可行和死胞细胞。
数据分析
从每一种染色和计数方法获得细胞浓度
样品标识 | 样本复制 | Cellometer AO + PI | Cellometer Ho + PI | 流HO +π | 血细胞计计台盼蓝 |
---|---|---|---|---|---|
示例1 | 1 | 2.53E + 08 | 2.54 e + 08年 | 3.22E + 08 | 3.00 e + 08年 |
示例1 | 2 | 2.82 e + 08年 | 2.29 e + 08年 | 2.01 e + 08年 | 2.60E + 08 |
示例1 | 3. | 2.51E + 08 | 1.94 e + 08年 | 2.09E + 08 | 3.30E + 08 |
示例1 | 4. | 2.04E + 08 | 没有数据 | 2.21E + 08 | 3.20e + 08 |
大街 | 2.47E + 08 | 2.26E + 08 | 2.38 e + 08年 | 3.03 e + 08年 | |
STDEV. | 3.19E + 07 | 3.01e + 07 | 5.64 e + 07 | 3.10E + 07 | |
示例2 | 1 | 3.27E + 08 | 2.50 e + 08年 | 2.82 e + 08年 | 2.60E + 08 |
示例2 | 2 | 3.05e + 08 | 2.70E + 08 | 2.86E + 08 | 2.70E + 08 |
示例2 | 3. | 2.66 e + 08年 | 3.31 e + 08年 | 2.87 e + 08年 | 2.90E + 08 |
示例2 | 4. | 2.37E + 08 | 2.61 e + 08年 | 2.57E + 08 | 2.40E + 08 |
大街 | 2.84 e + 08年 | 2.78 e + 08年 | 2.78 e + 08年 | 2.65E + 08 | |
STDEV. | 4.04E + 07. | 3.63e + 07 | 1.42 e + 07 | 2.08E + 07. |
计数方法之间的一致相关性

具有代表性的细胞计图像显示SVF样本的活力染色
样品1的Cellometer图像1:SVF与AO + PI染色

Cellometer图像显示亮视野(左),AO染色(中)和AO染色计数的细胞(右)到“Cellometer图像显示亮视野(左),AO染色(中)和AO/PI计数合并图像(右)。由于细胞活力高,合并图中可见绿色AO阳性细胞
Cellometer 2的样品2:SVF与HO + PI染色

Cellometer Image展示明亮的场(左),Hoechst染色(中央)和Hoechst染色的电池(右)到“Cellometer Images展示明亮的场(左),Hoechst染色(Center)和Hoechst + PI计数合并的图像(右)。由于高可行性,仅在合并图像中看到活成核细胞。
结论
初级间质血管组分(SVFs)的特点是细胞类型的复杂性,通常在每个样本中发现。这种复杂性并非没有一些缺点。如上面的亮场图像所示,SVF样本中有大量的细胞碎片,这大大增加了获取正确细胞数量和活力的能力。
在这项研究中,我们将Cellometer Vision CBA平台与使用血晶计以及流式细胞仪进行了手动计数。结果表明,这些计数方法之间存在较大的相关性,具有云计平台与流式细胞仪之间的最大相似性。
通过使用像AO / PI和Hoechst / Pi等染料的细胞核,它显着提高了适当和准确的计数和活力的置信度。另外,在明亮场和荧光通道中浇出小碎屑的能力确保获得正确的细胞计数。
使用小样品体积(20μL)的同时执行快速染色(AO / PI染色的瞬时)和分析(用于成像和分析的30秒),使得Cellometer Vision CBA成为获得细胞浓度和活力的理想系统基质血管分数。
参考文献
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